Etiologia Malaria jest wywoływana przez pierwotniaki z rodzaju Plasmodium . U człowieka są to cztery gatunki: P. falciparum, P. malariae, P. ovale i P. vivax. P. vivax jest najczęstszym czynnikiem etiologicznym malarii w skali światowej, odpowiadając za około 80% zachorowań. Jednak P. falciparum uważany jest za istotniejszy patogen, odpowiedzialny za tylko 15% zachorowań, ale aż 90% zgonów[2]. Pasożytnicze gatunki z rodzaju Plasmodium zarażają też ptaki, gady, małpy i gryzonie[3]. Udokumentowano przypadki zarażeń człowieka gatunkami typowo wywołującymi chorobę u małp, mianowicie P. knowlesi, P. inui, P. cynomolgi[4], P. simiovale, P. brazilianum, P. schwetzi i P. simium; znaczenie epidemiologiczne tych infekcji jest jednak bardzo ograniczone. Ptasia zimnica może być śmiertelna dla kur i indyków, ale nie przyczynia się do ekonomicznych strat u hodujących te ptaki. Jej zawleczenie na Hawaje przyczyniło się jednak do poważnego zagrożenia występującej tam endemicznej awifauny[5]. Cykl rozwojowy zarodźca u człowieka W cyklu rozwojowym zarodźców występuje 2 żywicieli: Ogólny schemat cyklu rozwojowego przedstawicieli rodzaju Plasmodium powodujących malarię u człowieka jest identyczny, różnice pomiędzy poszczególnymi gatunkami są niewielkie. Sporozoity zarodźca dostają się do krwi. Część z nich zostaje zniszczona przez leukocyty, ale wiele z biegiem krwi dostaje się do wątroby. W ciągu ok. 30 minut sporozoity znikają z krwi. W komórkach wątroby (hepatocytach) w ciągu 1-3 tygodni przebiega dalsza faza rozwojowa tzn. pozakrwinkowa faza rozwojowa (schizogonia pozakrwinkowa). Sporozoity zmieniają swój kształt, tworząc formę schizonta. Schizonty dzielą się wielokrotnie, przekształcają się i ostatecznie pękają uwalniając 2-40 tys. merozoitów, które uwalniane są do krwi. Proces ten w zależności od gatunku zarodźca trwa 5-21 dni, lecz w wypadku P. vivax i P. ovale schizogonia pozakrwinkowa może być opóźniona nawet do 1-2 lat – takie "uśpione" formy pierwotniaka nazywane są hypnozoitami. Z tego względu mogą występować późne nawroty malarii. Chociaż zjawisko takie nie występuje w przypadku P. falciparum i P. malariae, to występuje u nich przewlekła faza choroby we krwi, co powoduje nawroty w ciągu kilku lat (P. falciparum) lub nawet kilkanaście (P. malariae). Merozoity zaczynają atakować czerwone krwinki i w wyniku ich działania dochodzi do rozpadu erytrocytów, co powoduje wystąpienie objawów chorobowych typowych dla malarii. W erytrocytach zachodzi albo proces schizogonii krwinkowej, kiedy powstają w dużej liczbie schizonty lub wytwarzane są stosunkowo nieliczne gametocyty (rozmnażanie płciowe zarodźca), które z pobieraną krwią mogą zarażać samice komara z rodzaju Anopheles. W przewodzie pokarmowym samicy komara tworzą one gamety, a po zapłodnieniu zygotę. Zygota przekształca się w oocystę, w której powstaje do ok. 10 tys. sporozoitów. Gdy oocysta pęka, sporozoity przemieszczają się do jamy ciała, a stamtąd do gruczołów ślinowych. Proces powstawania zakaźnych dla człowieka, inwazyjnych form trwa 2-3 tygodnie. Cechami wspólnymi tych pierwotniaków są schizogoniczny podział w hepatocytach (stadia trofozoita i schizonta) oraz w erytrocytach (stadium pierścienia, schizonta, merozoita) oraz podział gamogoniczny (gamety, ookineta) i sporogoniczny (sporocysta, sporozoity) w organizmie komara. | Porównanie przebiegu malarii spowodowanej rożnymi gatunkami zarodźca | | Gatunek | Okres wylęgania | Postać choroby | Periodyczność gorączki | | P. falciparum | 7–30 dni (90%) dłużej (10%)* | Malaria tropikalna | Brak regularności | | P. malariae | 16–50 dni | Czwartaczka | 72 h | | P. ovale | 12–18 dni, dłużej(10%)* | Trzeciaczka | 48 h | | P. vivax | 12–18 dni, dłużej(10%)* | Trzeciaczka | 48 h | * przy wcześniejszym zastosowaniu chemioprofilaktyki Rozpoznanie Podejrzenie zimnicy można powziąć na podstawie objawów chorobowych u osoby mieszkającej lub powracającej z terenów endemicznego jej występowania. Czasem prawidłowe rozpoznanie jest opóźnione ze względu na mylenie objawów zimnicy z innymi chorobami gorączkowymi. Laboratoryjnym potwierdzeniem rozpoznania są badania rozmazów krwi obwodowej (tzw. grubej kropli) barwionej metodą Giemsy, w których stwierdza się pierwotniaki wewnątrz krwinek czerwonych. Ciężki przebieg malarii stwierdza się w wypadku stwierdzenia zarodźców w ponad 20% krwinekpotrzebne źródło. Dostępne są też testy bibułowe na obecność antygenów P. falciparum. Alternatywna metodą wykrycia pasożytów jest koncentracja krwinek w rurkach hematokrytowych. Niektóre laboratoria dysponują możliwościami określenia szczepu pasożyta i jego lekooporności metodą PCR. | Porównanie morfologii gatunków zarodźca wywołujących malarię u człowieka (wg CDC[6]) | | Gatunek | Stadia obecne we krwi | Wygląd erytrocytu | Morfologia pasożyta | | Plasmodium falciparum | Pierścień | Prawidłowy; więcej niż w infekcjach innymi gatunkami krwinek zawiera pasożyta | Delikatna cytoplazma; 1-2 małe grudki chromatyny; okazjonalnie postaci appliqué | | Trofozoit | Prawidłowy; rzadko, szczeliny Maurera* | Rzadko obserwowane w krwi obwodowej; zbita cytoplazma; ciemny barwnik | | Schizont | Prawidłowy; rzadko, szczeliny Maurera* | Rzadko obserwowane w krwi obwodowej; dojrzałe = 8-24 małych merozoitów; ciemny barwnik, zgromadzony w jednym miejscu | | Gametocyt | Zniszczony przez pasożyta | Księżycowaty lub kiełbaskowaty kształt; chromatyna zbita w jedną grudkę (makrogametocyt) lub rozproszona (mikrogametocyt); ziarna ciemnego barwnika | | Plasmodium vivax | Pierścień | Prawidłowy-powiększony do 0,25×; okrągły; okazjonalnie plamki Schüffnera; nierzadko masywna infekcja licznych erytrocytów | Obfita cytoplazma, niekiedy pseudopodia; duża grudka chromatyny | | Trofozoit | Powiększony do 0,5-2×, może być uszkodzony; plamki Schüffnera | Obfita cytoplazma i ameboidalny wygląd; obfita chromatyna; drobne ziarna żółtawobrązowego barwnika | | Schizont | Powiększony do 0,5-2×, może być uszkodzony; plamki Schüffnera | Duży, może niemal całkiem wypełniać erytrocyt; dojrzałe = 12-24 merozoitów; zółtawobrązowy, zbity pigment | | Gametocyt | Powiększony 0,5-2×; może być uszkodzony; plamki Schüffnera | Okrągły lub owalny; zbity; może całkiem wypełniać wnętrze krwinki czerwonej; chromatyna zbita, rozmieszczona ekscentrycznie (makrogametocyt) lub rozproszona (mikrogametocyt); rozrzucone ziarna brązowego barwnika | | Plasmodium ovale | Pierścień | Normalny lub powiększony do 0,25×; okrągły lub owalny; okazjonalnie plamki Schüffnera; niektóre z postrzępionym brzegiem; nierzadko masywna inwazja erytrocytów | Gęsta cytoplazma; obfita chromatyna | | Trofozoit | Normalny lub powiększony do 0,25×; okrągły lub owalny; niektóre z postrzępionym brzegiem; plamki Schüffnera | Zbite, z obfitą chromatyną i ciemnobrązowym barwnikiem | | Schizont | Normalny lub powiększony do 0,25×; okrągły lub owalny; niektóre z postrzępionym brzegiem; plamki Schüffnera | Dojrzałe = 6-14 merozoitów z dużymi jądrami, otoczonych ciemnobrązowym barwnikiem | | Gametocyt | Normalny lub powiększony do 0,25×; okrągły lub owalny; niektóre z postrzępionym brzegiem; plamki Schüffnera | Okrągłe lub owalne; mogą całkiem wypełniać erytrocyt; chromatyna zbita, ekscentrycznie (makrogametocyt) lub bardziej równomiernie rozproszona (mikrogametocyt); rozsiane ziarna brązowego barwnika | | Plasmodium malariae | Pierścień | Normalny lub powiększony do 0,75× | Gęsta cytoplazma; obfita chromatyna | | Trofozoit | Normalny lub powiększony do 0,75×; rzadko, kropkowanie Ziemanna* | Zbita cytoplazma; obfita chromatyna; okazjonalnie postaci pasmowate; gruboziarnisty brązowy barwnik | | Schizont | Normalny lub powiększony do 0,75×; rzadko, kropkowanie Ziemanna* | Dojrzałe = 6-12 merozoitów z dużymi jądrami, otoczonych ciemnobrązowym gruboziarnistym barwnikiem; niekiedy rozetki | | Gametocyt | Normalny lub powiększony do 0,75×; rzadko, kropkowanie Ziemanna* | Okrągłe lub owalne; mogą całkiem wypełniać erytrocyt; chromatyna zbita, ekscentrycznie (makrogametocyt) lub bardziej równomiernie rozproszona (mikrogametocyt); rozsiane ziarna brązowego barwnika | | * widoczne w specjalnym barwieniu | Leczenie -
| Porównanie leków przeciwmalarycznych[7] | | Lek | Koszt ($, 2003) | Liczba dawek | Czas trwania | Zabijane postaci zarodźca | Działania niepożądane | Przeciwwskazania | | Chlorochina | 0,11 | 3 | 48 h | Schizonty | Zaburzenia pracy przewodu pokarmowego, świąd, zawroty głowy, śmierć w wyniku przedawkowania | Padaczka | | Sulfadoksyna+pirymetamina | 0,14 | 1 | Pojedyncza dawka | Schizonty | Zespół Stevensa-Johnsona | Ciąża, choroba nerek | | Chinina | 0,97 | 21 | 7 dni | Schizonty | Tinnitus, zawroty głowy, bóle głowy, gorączka, delirium, nudności | Niedobór G6PD, zapalenie nerwu wzrokowego, ciąża, szumy uszne, plamica małopłytkowa | | Meflochina | 2,55 | 1 | Pojedyncza dawka | Schizonty | Wymioty, ból głowy, insomnia, koszmary, lęk, psychoza | Depresja, schizofrenia, zaburzenia lękowe, psychozy, zaburzenia rytmu serca | | Atowakwon+chloroguanid | 48 | 3 | 48 h | Schizonty | Dyspepsja, ból głowy, zapalenie żołądka | | | Artemeter+lumefantryna | 9,12 | 6 | 48 h | Schizonty, gametocyty | Zawroty głowy, kołatanie serca | | | Artesunat+meflochina | 5 | 6 | 48 h | Schizonty, gametocyty | Wymioty, utrata łaknienia, biegunki | Depresja, schizofrenia, zaburzenia rytmu serca | | Artesunat+sulfadoksyna+pirymetamina | 2,40 | 3 | 48 h | Schizonty, gametocyty | | | | Artesunat+amodiachina | 2 | 3 | 48 h | Schizonty, gametocyty | | | | Halofantryna | | | | | Dyspepsja, wydłużenie QTc | Zatrzymanie akcji serca | | Prymachina | 1,68 | 7-14 | 7 dni | Schizonty w tkankach, gametocyty | Dyspepsja, methemoglobinemia, anemia hemolityczna | Ciąża, niedobór G6PD, laktacja | Przyczynowe leczenie zimnicy opiera się o chlorochinę, meflochinę, chininę, niekiedy prymachinę oraz doksycyklinę i leki skojarzone (atowakwon z prokwanilem, pirymetamina z sulfadoksyną) oraz kombinacje leków z artemeterem, halofantryną i lumefantryną. Meflochina jest najskuteczniejszym lekiem w zapobieganiu chorobie wywoływanej przez Plasmodium falciparum oporne na chlorochinę, jednak wywołuje liczne działania niepożądane. W dużych badaniach badaniach klinicznych małe dawki meflochiny wykazywały działania niepożądane nie częściej niż chlorochina. Połączenie atowakwonu i prokwanilu pod nazwą handlową Malarone dostępne jest w niektórych krajach europejskich, w tym w Polsce; skuteczność preparatu jest porównywalna z meflochiną, lek ma też mniej działań niepożądanych[8]. W profilaktyce choroby wywoływanej przez zarodźce wrażliwe na chlorochinę nie zaleca się już stosowania chlorochiny z prymachiną z powodu ryzyka wywołania hemolizy u chorych z niedoborem dehydrogenazy glukozo-6-fosforanowej. W Polsce leczenie zimnicy powinno być prowadzone w referencyjnych klinikach zajmujących się medycyną tropikalną (w Gdańsku, Poznaniu i Warszawie). - Oporność na leki przeciwmalaryczne
| Mechanizmy oporności Plasmodium falciparum na leki przeciwmalaryczne[7] | | Zmutowany gen | Produkt genu | Miejsce/typ mutacji | Lek | | pfcrt | Transporter | Thr76 | Chlorochina | | pfmdr1 | Transporter | Tyr86 | Chlorochina Meflochina Chinina Dihydroartemizyna | | dhps | Syntetaza dihydropteroinianu | Gly437, Glu540, Gly581 | Sulfadoksyna | | dhfr | Reduktaza dihydrofolianu | Asn108, Arg59, Ile51, Leu164 | Pirymetamina | | cytb | Cytochrom b | Ser268 | Atowakwon | W Papui Nowej Gwinei, na Wyspach Salomona, w Birmie oraz w części Indonezji i Indii zaobserwowano szczepy P. vivax oporne na chlorochinę. W zarażeniach tymi zarodźcami stosowano z powodzeniem chininę, meflochinę oraz halofantrynę, ale dotąd nie ustalono standardów leczenia[9]. Presja ewolucyjna malarii na ludzki genom Uważa się, że malaria wywarła największą presję selekcyjną na gatunek ludzki w jego najnowszej historiipotrzebne źródło. Powodem tego jest wysoki współczynnik zachorowalności i śmiertelności, zwłaszcza w chorobie wywołanej przez P. falciparum. Skutkiem presji jest upowszechnienie naturalnych mechanizmów odporności na chorobę na obszarach zagrożenia malarycznego. Niedokrwistość sierpowatokrwinkowa Zasięg występowania niedokrwistości sierpowatokrwinkowej w Afryce. Zasięg endemicznej zimnicy w Afryce. Najlepiej zbadany wpływ pasożyta na ludzki genom ma genetyczna choroba krwi jaką jest niedokrwistość sierpowatokrwinkowa (anemia sierpowata). Chorobę tę wywołuje mutacja w genie HBB kodującym podjednostkę β hemoglobiny. Prawidłowy allel genu koduje glutaminian w pozycji 6 łańcucha β globiny, podczas gdy w niedokrwistości glutaminian zastąpiony jest przez walinę. Zmienia to charakter łańcucha z hydrofilnego na hydrofobowy i sprawia, że cząsteczki hemoglobiny polimeryzują zniekształcając erytrocyty. Krwinki o nieprawidłowym kształcie są szybko usuwane z krążenia i niszczone, przede wszystkim w śledzionie. Talasemie Innym dobrze udokumentowanym przykładem presji selekcyjnej na genom ludzki spowodowanej przez malarię są mutacje wywołujące talasemie. Badania przeprowadzone na Sardynii[10] i Papui Nowej Gwinei wykazały, że częstość mutacji wywołującej β-talasemię zależy od częstości występującej tam endemicznie malarii. Badanie na grupie ponad 500 dzieci w Liberii dowiodło, że dzieci posiadające mutację wywołującą β-talasemię mają o 50% mniejsze ryzyko zachorowania na objawową malarię[11]. Inne prace potwierdziły istnienie zależności między częstością endemicznej malarii a prewalencją postaci α+ oraz α-talasemii na tych obszarach, co pozwala przypuszczać, że na geny warunkujące te postaci hemoglobinopatii również wywierana była w toku ewolucji ludzkiego genomu presja selekcyjna[12]. Antygeny Duffy Antygeny Duffy podlegają ekspresji w różnych komórkach ludzkiego organizmu, w tym w erytrocytach, i pełnią funkcje receptorów chemokin. Antygeny Duffy kodowane są przez geny Fy (Fya, Fyb, Fyc itd.). Plasmodium vivax potrzebuje antygenów Duffy, by móc wniknąć do erytrocytu. U niektórych ludzi antygeny Duffy nie podlegają ekspresji w tych komórkach (są Fy-/Fy-). Taki fenotyp zapewnia całkowitą oporność na zarażenie P. vivax . Spotykany jest rzadko u Europejczyków, Azjatów i w populacji amerykańskiej, za to jest bardzo rozpowszechniony wśród rdzennej ludności zachodniej i środkowej Afryki. Uważa się, że jest to skutek wysokiego narażenia na infekcję P. vivax w Afryce na przestrzeni ostatnich kilkuset lat[13]. Niedobór dehydrogenazy glukozo-6-fosforanowej -
Dehydrogenaza glukozo-6-fosforanowa (G6PD) jest enzymem zapewniającym ochronę erytrocytu przed stresem oksydacyjnym. Niedobór enzymu, określany też jako fawizm (OMIM+305900), jest częstą chorobą genetyczną o dziedziczeniu sprzężonym z chromosomem X. Wykazano, że nosiciele zmutowanego genu G6PD rzadziej zachorowują na ciężką postać zimnicy[14]. HLA i interleukina-4 Obecność antygenu HLA-B53 wiąże się z niskim ryzykiem zachorowania na malarię. Ta cząsteczka MHC klasy I prezentuje antygeny wątrobowych postaci zarodźców i sporozoitów komórkom T. Interleukina 4 produkowana przez aktywowane komórki T pobudza proliferację i różnicowanie komórek B wytwarzających przeciwciała. W badaniach przeprowadzonych na Fulanach zamieszkujących Burkina Faso, u których stwierdza się rzadsze zachorowania na ciężką malarię i wyższe niż w sąsiednich plemionach miana przeciwciał przeciwko antygenom zarodźców, stwierdzono związek allelu IL4-524 T z podwyższonym mianem przeciwciał przeciwko antygenom pasożyta; potwierdza to hipotezę o związku HLA-B53 z wrodzoną odpornością na zachorowania[15]. Malaria w Polsce[17] Terytorium Polski w przeszłości należało do terenów, na których malaria występowała endemicznie. Pierwsze doniesienia o zachorowaniach na malarię pochodzą z XIX wieku. Ważniejsze epidemie malarii stwierdzono w latach: 1846, 1847, 1854-1856, 1873, 1898, 1920-1923 oraz 1946-1949. W 1921 roku stwierdzono ponad 52 tysiące zachorowań, a latach 1921-1926 podjęto pierwszą akcję zwalczania malarii w Polsce. Zaowocowało to tym, że w 1938 zarejestrowano już tylko 316 przypadków tej choroby wywołanej głównie przez P. vivax. Poprawę zaobserwowano w latach 50. XX wieku, a uzyskano ją w następstwie prowadzenia od 1945 intensywnej akcji przeciwmalarycznej, prowadzonej przez Naczelny Nadzwyczajny Komisariat do Walki z Epidemiami. Wyraźny i stały spadek zachorowań na malarię stwierdzano od roku 1950, a od 1956 notowano tylko sporadyczne zachorowania zawleczone z innych krajów. W roku 1968 Światowa Organizacja Zdrowia uznała Polskę za kraj wolny od zimnicy endemicznej. Aktualnie na terenie Polski choroba nie występuje. Liczba zgłaszanych zachorowań na malarię w latach 1970-1993 wahała się od kilku do ponad 30 rocznie. Były to głównie zachorowania wywołane przez P. vivax i stwierdzane u osób powracających z zagranicy. Zgony były tylko pojedyncze. W latach 1994-2000 liczba zgłaszanych zachorowań rocznie wahała się od 18 (1994) do 38 (1998) Czynnikiem etiologicznym w większości był P. falciparum. Stwierdzono 7 zgonów. Nie jest całkowicie wykluczone lokalne szerzenie się w Polsce malarii zawleczonej z zagranicy, ponieważ w Polsce występują powszechnie komary zdolne do jej roznoszenia[18]. Zimnica umieszczona jest w urzędowym wykazie chorób zakaźnych i zakażeń podlegających zgłaszaniu do jednostek sanitarno-epidemiologicznych[19]. Rys historyczny W 1880 roku francuski lekarz wojskowy Charles Louis Alphonse Laveran przedstawił hipotezę, że malaria jest wywoływana przez pierwotniaka. Po raz pierwszy stwierdzono, że pierwotniaki mogą powodować chorobę u ludzi. Za swój wkład w medycynę został w roku 1907 uhonorowany Nagrodę Nobla w dziedzinie medycyny. Rok później kubański lekarz Carlos Finlay lecząc pacjentów chorujących na żółtą febrę po raz pierwszy zasugerował, że komary przenoszą tą chorobę. Brytyjczyk Ronald Ross w roku 1898 wykazał, że niektóre gatunki komarów przenoszą malarię na ptaki i w roku 1902 uzyskał Nagrodę Nobla w dziedzinie medycyny za opisanie cyklu rozwojowego malarycznego pasożyta. Przypisy - ↑ http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/bv.fcgi?rid=dmssa.chapter.1230
- ↑ Mendis K, Sina B, Marchesini P, Carter R. The neglected burden of Plasmodium vivax malaria. „Am J Trop Med Hyg”. 64. 1-2 Suppl, ss. 97-106 (2001). PMID 11425182.
- ↑ Escalante A, Ayala F. Phylogeny of the malarial genus Plasmodium, derived from rRNA gene sequences. „Proc Natl Acad Sci U S A”. 91. 24, ss. 11373-11377 (1994). PMID 7972067.
- ↑ Garnham, PCC. Malaria parasites and other haemosporidia. „Blackwell Scientific Publications” (1966).
- ↑ Atkinson CT, Woods KL, Dusek RJ, Sileo LS, Iko WM. Wildlife disease and conservation in Hawaii: pathogenicity of avian malaria (Plasmodium relictum) in experimentally infected iiwi (Vestiaria coccinea). „Parasitology”. 111. Suppl, ss. 59-69 (1995). PMID 8632925.
- ↑ CDC: Comparison of Plasmodium Species Which Cause Human Malaria.
- ↑ 7,0 7,1 Baird JK. Effectiveness of antimalarial drugs. „New England Journal of Medicine”. 352. 15, ss. 1565-77 (2005). PMID 15829537.
- ↑ de Alencar FE, Cerutti C Jr, Durlacher RR, Boulos M, Alves FP, Milhous W, et al. Atovaquone and proguanil for the treatment of malaria in Brazil. „J Infect Dis”. 175, ss. 1544-1547 (1997).
- ↑ Whitby M. Drug resistant Plasmodium vivax malaria. „J Antimicrob Chemother”. 40, ss. 749-752 (1997).
- ↑ Luzzatto L. Thalassemia and malaria selection. „Minerva Med”. 72. 10, ss. 603-12 (1981). PMID 7017472.
- ↑ Willcox M, Bjorkman A, Brohult J, Pehrson PO, Rombo L, Bengtsson E. A case-control study in northern Liberia of Plasmodium falciparum malaria in haemoglobin S and beta-thalassaemia traits. „Ann Trop Med Parasitol”. 77. 3, ss. 239-46 (1983). PMID 6354114.
- ↑ Yenchitsomanus PT, Summers KM, Bhatia KK, Cattani J, Board PG. Extremely high frequencies of alpha-globin gene deletion in Madang and on Kar Kar Island, Papua New Guinea. „Am J Hum Genet”. 37. 4, ss. 778-84 (1985). PMID 9556666.
- ↑ Carter R, Mendis KN. Evolutionary and historical aspects of the burden of malaria. „Clin Microbiol Rev”. 15. 4, ss. 564-94 (2002). PMID 12364370.
- ↑ Allison AC, Clyde DF. Malaria in African children with deficient erythrocyte glucose-6-phosphate dehydrogenase. „Br Med J”. 1. 5236, ss. 1346-1349 (1961). PMID 13682585.
- ↑ Verra F, Luoni G, Calissano C, Troye-Blomberg M, Perlmann P, Perlmann H, Arcà B, Sirima B, Konaté A, Coluzzi M, Kwiatkowski D, Modiano D. IL4-589C/T polymorphism and IgE levels in severe malaria. „Acta Trop”. 90. 2, ss. 205-9 (2004). PMID 15177147.
- ↑ Science. 2002 Oct 4;298(5591):129-49
- ↑ http://www.pzh.gov.pl/epimeld/2001/M_01_08A.pdf
- ↑ W O R L D M A L A R I A R E P O R T 2 0 0 5: Global distribution of dominant malaria vectors
- ↑ Ustawa z dnia 6 września 2001 r. o chorobach zakaźnych i zakażeniach. „Dziennik Ustaw”. Nr 126. poz. 1384 (2001).
- ↑ Marcin Dominik Zdort: Pampersi – czas przeszły dokonany, Rzeczpospolita, 14 maja 2002
Linki zewnętrzne
|